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食作用

食作用の概要を示す。食作用は、細胞が細胞膜を使って細胞外物質を包み込む能動的な輸送(エンドサイトーシス)の一形態である。食作用では、比較的選択性が低く、大きな粒子を取り込む。
(左) 食作用(ファゴサイトーシス)と (右) 開口分泌(エキソサイトーシス)

食作用(しょくさよう、: phagocytosis[注釈 1]ファゴサイトーシス)または貪食(どんしょく)は、細胞がその細胞膜を使って大きな粒子(0.5 μm以上)を取り込み、ファゴソーム(食胞)と呼ばれる内部区画を形成するプロセスである。これはエンドサイトーシスの一種である。食作用を行う細胞を食細胞(ファゴサイト)と呼ぶ。

食細胞による病原体の飲み込み

多細胞生物免疫系では、食作用は病原体や細胞の残骸を異物として除去するための主要な機構である。摂取された物質は、ファゴソーム内で消化される。細菌ウイルス、死んだ組織細胞、寄生虫、異常な代謝産物、小さな鉱物粒子などが、貪食される可能性のある物質の例である。原生動物の中には、食作用を利用して栄養素を摂取するものがある。

歴史

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食作用は、カナダの医師ウィリアム・オスラーが最初に指摘し(1876年)[1]、その後、イリヤ・メチニコフが研究し命名した(1880年と1883年)[2]

免疫系での食作用

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炭疽菌 (オレンジ色、左) を貪食する食細胞 (黄色、右) の走査型電子顕微鏡写真

食作用は、自然免疫防御の主要な機構の一つである。これは、感染に応答する最初のプロセスの1つであり、適応免疫応答の開始ブランチの1つでもある。ほとんどの細胞は食作用を行うことができ、一部の細胞は主な機能の一部として食作用を実行する。これらは「プロフェッショナルの食細胞」(professional phagocytes)と呼ばれている。食作用は進化という観点から見ると古く、無脊椎動物にも存在している[3]

プロフェッショナルの食細胞

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細菌を貪食するヒト血液中の好中球の光学顕微鏡ビデオシーケンス

好中球マクロファージ単球樹状細胞破骨細胞、および好酸球は、プロフェッショナルの食細胞として分類される[2]。最初の3つは、ほとんどの感染症に対する免疫応答に最も大きな役割を果たす[3]

好中球の役割は、血流をパトロールし、感染の場合にのみ大変な数で組織に急速に移動することである[3]。そこでは食作用による直接的な殺傷効果がある。摂取後の好中球は、病原体を細胞内で効率的に殺滅する。好中球は、主にFcγ受容体と補体受容体1および3を介して貪食する。好中球の殺滅効果は、あらかじめ形成された顆粒に存在する分子のたくさんのレパートリーによるものである。この顆粒に用意されている酵素や他の分子は、コラゲナーゼ英語版ゼラチナーゼ、またはセリンプロテアーゼなどのプロテアーゼ、ミエロペルオキシダーゼラクトフェリン、および抗生物質タンパク質である。これらのファゴソームへの脱顆粒は、高い活性酸素種の産生(呼吸性バースト英語版)を伴い、非常に高い殺菌力がある[4]

単球やそれが成熟したマクロファージは、血液循環から離れて組織内を移動する。そこでは、これらは常在細胞となり、静止した防壁を形成する[3]。マクロファージは、マンノース受容体英語版スカベンジャー受容体英語版Fcγ受容体補体受容体英語版1、3、4によって食作用を開始する。マクロファージは長寿命で、新たなリソソームを形成することで食作用を継続することができる[3][5]

また、樹状細胞も組織内に存在し、食作用によって病原体を摂取する。それらの役割は、微生物を殺したり除去することではなく、適応免疫系の細胞に抗原提示するために微生物を分解することである[3]

食作用を誘発する受容体

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食作用のための受容体は、認識される分子によって2つのカテゴリーに分類される。1つ目のオプソニン受容体はオプソニンに依存している[6]。これらの中には、結合したIgG抗体のFc部分を認識する受容体や、細胞や血漿由来の他のオプソニンを認識する沈着した補体や受容体がある。2つ目の非オプソニン受容体には、レクチン様受容体、デクチン英語版受容体、スカベンジャー受容体がある。一部の食細胞経路は、病原体関連分子パターン(PAMPS)への付着によって活性化されたパターン認識受容体(PRR)からの第2のシグナルを必要とし、これによってNF-κBが活性化される[2]

Fcγ受容体

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Fcγ受容体は、IgGでコーティングされた標的を認識する。主に認識される部分はFcフラグメントである。受容体の分子は、細胞内ITAMドメイン英語版を持っているか、ITAM含有アダプター分子と結合している。ITAMドメインは、食細胞の表面から核にシグナルを伝達する。たとえば、ヒトマクロファージの活性化受容体には、FcγRI英語版FcγRIIA英語版FcγRIII英語版がある[5]。Fcγ受容体を介した食作用では、「食作用カップ」と呼ばれる細胞の突起が形成され、好中球の酸化的バーストを活性化する[4]

補体受容体

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これらの受容体は、血漿補体からC3b英語版C4b英語版、およびC3biでコーティングされた標的を認識する。受容体の細胞外ドメインには、レクチン様補体結合ドメインが含まれる。補体受容体による認識だけでは、付加的なシグナルなしで内在化を起こせない。マクロファージでは、CR1英語版CR3英語版、CR4が標的の認識を担っている。補体でコーティングされた標的は、突起なしで、食細胞膜に「沈み込む」ことで内在化される[5]

マンノース受容体

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マンノースおよびフコースなどの病原体に関連する糖類は、マンノース受容体によって認識される。8つのレクチン様ドメインが受容体の細胞外部分を形成する。マンノース受容体を介した摂取は、Fcγ受容体または補体受容体を介した食作用とは分子メカニズムが異なる[5]

ファゴソームの分解

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物質の飲み込みはアクチン-ミオシン収縮系によって促進される。物質の食作用によってファゴソーム(phagosome、食胞)と呼ばれる細胞小器官が形成される。その後、これは食細胞の中心体に向かって移動し、リソソーム(lysosome、水解小体)と融合してファゴリソソームを形成し分解に至る。ファゴリソソームは次第に酸性化され、分解酵素が活性化する[2][7]

分解は、酸素依存性または酸素非依存性の2種類がある。

  • 酸素依存性分解は、NADPH活性酸素種の生成に依存する。過酸化水素ミエロペルオキシダーゼがハロゲン化反応を活性化させ、次亜塩素酸塩の生成および細菌の破壊をもたらす[8]
  • 酸素非依存性分解は、リゾチームなどの酵素やディフェンシンなどのカチオン性タンパク質を含む顆粒の放出に依存する。これらの顆粒には他の抗菌ペプチドも存在しており、ラクトフェリンを補足して細菌にとって好ましくない増殖条件を作り出す。また、ヒアルロニダーゼ、リパーゼ、コラゲナーゼ、エラスターゼ、リボヌクレアーゼ、デオキシリボヌクレアーゼなどの他の酵素も、感染の拡大を妨げ、細胞死につながる必須の微生物生体分子の分解に重要な役割を果たす[4][5]

白血球は、食作用の際にシアン化水素を生成し、いくつかの他の毒性化学物質を生成することで細菌真菌、他の病原体を殺滅することができる[9][10][11]

梅毒トレポネーマTreponema pallidum)、大腸菌Escherichia coli)、黄色ブドウ球菌Staphylococcus aureus)などの一部の細菌は、いくつかの機構によって食作用を回避することができる[要出典]

獲得免疫の誘導

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また、異物の分解産物の一部は細胞膜表面に提示され、これをリンパ球T細胞)が認識する。このことによりT細胞の分化が生じ、抗原に特異的な免疫である獲得免疫細胞性免疫あるいは液性免疫)が誘導される[要出典]

アポトーシスでの食作用

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死につつある細胞は、アポトーシスに続いて、エフェロサイトーシスと呼ばれるプロセスで、マクロファージによって周囲の組織に取り込まれる必要がある。アポトーシス細胞の特徴の一つは、カルレティキュリンホスファチジルセリン(細胞膜内層から)、アネキシンA1英語版、酸化LDL、変化した糖鎖など、さまざまな細胞内分子が細胞表面に提示されることである[12]。これらの分子は、ホスファチジルセリン受容体のようなマクロファージの細胞表面にある受容体、またはトロンボスポンジン1英語版GAS6英語版MFGE8英語版のような可溶性(浮遊)受容体によって認識され、CD36英語版αVβ3英語版インテグリンのようなマクロファージ上の他の受容体と結合する。アポトーシス細胞のクリアランスの障害は、通常、マクロファージの障害食作用と関連している。アポトーシス細胞の残骸が蓄積すると、しばしば自己免疫疾患を引き起こす。したがって、食作用を薬理学的に増強することは、ある種の自己免疫疾患の治療において医学的な可能性を秘めている[13][14][15][16]

赤血球を摂取した赤痢アメーバの栄養体

原生生物での食作用

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多くの原生生物では、食作用は栄養の一部または全部を提供する摂食手段として使用される。これは貪食栄養と呼ばれ、吸収によって起こる浸透圧栄養とは区別される[要出典]

免疫細胞の場合と同様に、得られたファゴソームは消化酵素を含むリソソームと融合して、ファゴリソソームを形成する可能性がある。次に、食物粒子が消化され、放出された栄養素は、他の代謝プロセスで使用するために細胞質ゾルに拡散または輸送される [18]

混合栄養生物では、貪食栄養と光合成栄養を伴う可能性がある [19]

参照項目

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脚注

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注釈

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  1. ^ 言語は 古代ギリシャ語 φαγεῖν (phagein) で意味は'摂食する', and κύτος, (kytos) で意味は'細胞'

出典

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  1. ^ Ambrose, Charles T. (2006). “The Osler slide, a demonstration of phagocytosis from 1876: Reports of phagocytosis before Metchnikoff's 1880 paper”. Cellular Immunology 240 (1): 1–4. doi:10.1016/j.cellimm.2006.05.008. PMID 16876776. 
  2. ^ a b c d Gordon, Siamon (March 2016). “Phagocytosis: An Immunobiologic Process”. Immunity 44 (3): 463–475. doi:10.1016/j.immuni.2016.02.026. PMID 26982354. 
  3. ^ a b c d e f M.), Murphy, Kenneth (Kenneth (2012). Janeway's immunobiology. Travers, Paul, 1956-, Walport, Mark., Janeway, Charles. (8th ed.). New York: Garland Science. ISBN 9780815342434. OCLC 733935898 
  4. ^ a b c Witko-Sarsat, Véronique; Rieu, Philippe; Descamps-Latscha, Béatrice; Lesavre, Philippe; Halbwachs-Mecarelli, Lise (May 2000). “Neutrophils: Molecules, Functions and Pathophysiological Aspects”. Laboratory Investigation 80 (5): 617–653. doi:10.1038/labinvest.3780067. ISSN 0023-6837. PMID 10830774. 
  5. ^ a b c d e Aderem, Alan; Underhill, David M. (April 1999). “Mechanisms of Phagocytosis in Macrophages”. Annual Review of Immunology 17 (1): 593–623. doi:10.1146/annurev.immunol.17.1.593. ISSN 0732-0582. PMID 10358769. 
  6. ^ The Immune System, Peter Parham, Garland Science, 2nd edition
  7. ^ Flannagan, Ronald S.; Jaumouillé, Valentin; Grinstein, Sergio (2012-02-28). “The Cell Biology of Phagocytosis” (英語). Annual Review of Pathology: Mechanisms of Disease 7 (1): 61–98. doi:10.1146/annurev-pathol-011811-132445. ISSN 1553-4006. PMID 21910624. 
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  9. ^ Borowitz JL, Gunasekar PG, Isom GE (12 Sep 1997). “Hydrogen cyanide generation by mu-opiate receptor activation: possible neuromodulatory role of endogenous cyanide”. Brain Research 768 (1–2): 294–300. doi:10.1016/S0006-8993(97)00659-8. PMID 9369328. 
  10. ^ Stelmaszyńska, T (1985). “Formation of HCN by human phagocytosing neutrophils--1. Chlorination of Staphylococcus epidermidis as a source of HCN”. Int J Biochem 17 (3): 373–9. doi:10.1016/0020-711x(85)90213-7. PMID 2989021. 
  11. ^ Zgliczyński, Jan Maciej; Stelmaszyńska, Teresa (1988). The Respiratory Burst and its Physiological Significance. pp. 315–347. doi:10.1007/978-1-4684-5496-3_15. ISBN 978-1-4684-5498-7 
  12. ^ Bilyy RO, Shkandina T, Tomin A, Muñoz LE, Franz S, Antonyuk V, Kit YY, Zirngibl M, Fürnrohr BG, Janko C, Lauber K, Schiller M, Schett G, Stoika RS, Herrmann M (January 2012). “Macrophages discriminate glycosylation patterns of apoptotic cell-derived microparticles”. The Journal of Biological Chemistry 287 (1): 496–503. doi:10.1074/jbc.M111.273144. PMC 3249103. PMID 22074924. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3249103/. 
  13. ^ Mukundan L, Odegaard JI, Morel CR, Heredia JE, Mwangi JW, Ricardo-Gonzalez RR, Goh YP, Eagle AR, Dunn SE, Awakuni JU, Nguyen KD, Steinman L, Michie SA, Chawla A (November 2009). “PPAR-delta senses and orchestrates clearance of apoptotic cells to promote tolerance”. Nature Medicine 15 (11): 1266–72. doi:10.1038/nm.2048. PMC 2783696. PMID 19838202. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2783696/. 
  14. ^ Roszer, T; Menéndez-Gutiérrez, MP; Lefterova, MI; Alameda, D; Núñez, V; Lazar, MA; Fischer, T; Ricote, M (Jan 1, 2011). “Autoimmune kidney disease and impaired engulfment of apoptotic cells in mice with macrophage peroxisome proliferator-activated receptor gamma or retinoid X receptor alpha deficiency”. Journal of Immunology 186 (1): 621–31. doi:10.4049/jimmunol.1002230. PMC 4038038. PMID 21135166. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4038038/. 
  15. ^ Kruse, K; Janko, C; Urbonaviciute, V; Mierke, CT; Winkler, TH; Voll, RE; Schett, G; Muñoz, LE et al. (September 2010). “Inefficient clearance of dying cells in patients with SLE: anti-dsDNA autoantibodies, MFG-E8, HMGB-1 and other players”. Apoptosis 15 (9): 1098–113. doi:10.1007/s10495-010-0478-8. PMID 20198437. 
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  17. ^ “In the polymorphic ciliate Tetrahymena vorax, the non-selective phagocytosis seen in microstomes changes to a highly selective process in macrostomes”. The Journal of Experimental Biology 205 (Pt 14): 2089–97. (July 2002). PMID 12089212. 
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  19. ^ “Mixotrophy of a photosynthetic flagellate viewed from an optimal foraging perspective”. Protist 154 (1): 91–8. (April 2003). doi:10.1078/143446103764928512. PMID 12812372. 

外部リンク

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